FUNGICIDAS PENETRANTES Y SISTEMICOS
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Ing. Agr. Vivienne Gepp, MSc. e Ing. Agr. Pedro Mondino
Universidad de la República
Facultad de Agronomía
Departamento de Protección Vegetal
Unidad de Fitopatología
Los fungicidas penetrantes y sistemicos pueden dividirse en los siguientes grupos
Dicarboximidas.
Iprodione, Procimidone, Vinclozolin, Clozolinate, diclozoline.
Interfieren con la actividad y/o síntesis de ADN. Inhiben la germinación de esporas y provocan lisis de hifas. Se han reportado casos de acostumbramiento de hongos en varios países, aunque la resistencia es relativa y la población puede volver a ser sensible luego de unos meses sin contacto con este grupo de fungicidas.
Escasa capacidad de moverse en el vegetal, se comportan más como productos de contacto con buen grado de absorción.
Son muy usados en horticultura y en fruticultura por su acción sobre especies de los géneros: Botrytis, Sclerotinia, Alternaria, Septoria, Phoma, Rhizoctonia, Helminthosporium, Penicillium Monilia.
No controlan Oomycetes, Zigomicetes ni Basidiomycetes.
Para evitar resistencia en Botrytis cinerea, FRAC recomienda: no aplicar más de dos o tres veces por ciclo de cultivo, restringir las aplicaciones a momentos cuando la presión de infección es alta, mantener períodos prolongados sin usar este grupo de productos, cuando aparece resistencia utilizar combinación de productos.
Benzimidazoles.
Benomil, carbendazim, metil tiofanato, tiabendazol, fuberidazol.
Inhiben la síntesis de la tubulina, el sitio de acción es un aminoácido de la β-tubulina. Esta sustancia existe en todas las células eucariotas, aunque Oomycetes y plantas son insensitibles a los bencimidazoles, no se sabe por qué.
El cambio de un sólo aminoácido (fenilalanina → tirosina, o arginina → histidina) se traduce en resistencia. Las cepas insensibles pueden la misma habilidad competitiva como las sensibles. Existe resistencia cruzada negativa con Dietofencarb.
Facilidad de absorción por la planta: metil tiofanato > tiofanato > benomil > carbendazim >tiabendazol.
Mejoran la absorción: la acidificación y los humectantes no iónicos.
Transporte por el los vasos del xilema (acrópeto).
Amplio espectro de acción principalmente dentro de asco- y deuteromicotina. Contra los géneros:
Venturia, Erysiphe, Sphaerotheca, Podosphaera, Botrytis, Monilinia, Sclerotinia, Nectria, Fusarium,
Verticillium, Penicillium, Cladosporium, Ascochyta, Phoma, Phomopsis, Thielaviopsis, Diplocarpon, Mycosphaerella, Botryosphaeria, Pyricularia, Gloesporium, Cercospora, Septoria, Ceratocystis, y Rhizoctonia.
No poseen acción contra: Oomycetes (Phytophthora, Peronospora, etc.), Zigomycetes (Rhizopus) y la mayoría de los basidiomycetes (royas carbones), ni contra algunas especies de Deuteromycetes (Alternaria, Helminthosporium). No poseen acción bactericida.
Para reducir los problemas de resistencia FRAC recomienda utilizar mezclas (preferido) o alternar con otros sitios de acción.
Son lombricidas y son retenidos en los primeros 2 – 5 cm del suelo. Pueden aumentar la incidencia de ácaros al matar tanto a los que son plaga como a los predatores (enemigos naturales), reinfestando rápidamente los fitófagos.
Efecto retroactivo de 24 a 36 hs. contra Venturia inaequalis (sarna del manzano).
Período de entrada restringida 24 hs.
Inhibidores de la biosíntesis del ergosterol (IBE).
No controlan Oomycetes, ya que éstos absorben todo el ergosterol que necesitan del medio que les rodea.
No inhiben germinación de esporas, ya que éstos utilizan sus reservas de esteroles.
Alto riesgo de generar resistencia, pero del tipo poligénico. FRAC recomienda no usarlos repetidamente en la misma estación de crecimiento contra patógenos de alto riesgo en áreas de alta presión de la misma, alternar con productos de bajo riesgo, reservarlos para momentos críticos del cultivo, usar las dosis recomendadas, no usar funguicidas como sustituto de otros tipos de control.
Actúan sobre: Ascomycetes, Basidiomycetes y Deuteromycetes. En general poseen fuerte acción contra oidios y royas, y según los casos contra hongos causantes de algunas manchas foliares de los géneros: Venturia, Alternaria, Penicillium, Monilia, Cercospora, etc.
No tienen acción contra Oomycetes ni Zigomycetes (Rhizopus).
Efecto retroactivo contra Venturia inaequalis: 72 a 96 hs; acción preventiva débil: 3 a 4 días.
Posible efecto sobre el crecimiento vegetativo y o forma de los frutos. No recomendados en montes muy altos o de copa densa.
Es un grupo muy numeroso de desarrollo reciente, que se divide en dos según el paso metabólico afectado.
Subgrupo de los inhibidores de la demetilación-C14 (DMI)
Es el más numeroso, comprende varios grupos químicos:
∗ Triazoles: triadimenol, propiconazol, ciproconazol, difenoconazole, tebuconazol, flusilazol, miclobutanil, hexaconazol, bitertanol, penconazol, epoxiconazol, fuconazol, etc.
∗ Imidazoles: imazalil, procloraz, triflumizol.
∗ Pirimidinas: fenarimol, nuarimol.
∗ Piperazinas: triforine
Subgrupo de inhibidores de Δ8,7 isomerasa y Δ14 reductasa.
Incluye los principios activos más viejos.
Fenpropimorf, fenpropidin, tridemorf, dodemorf, aldimorf, piperalin, spiroxamine.
Importancia ≠ de los dos sitios de acción según el principio activo.
Dosis relativamente alta, comparada con el otro grupo.
Strobilurinas.
Es uno de los grupos más recientes de fungicidas registrados en el país, actualmente en desarrollo. Las strobilurinas son compuestos relacionados a un metabolito secundario del hongo Strobilurus tenacellus.
Actúan inhibiendo la respiración en un punto determinado (complejo del citocromo bc1), siendo por su sitio de acción clasificados como inhibidores QoI (=Quinone Outside Inhibitors). Comparten este sitio de acción con algunos otros principios activos de diferente grupo químico de reciente desarrollo para el control de Oomycetes (ej. Fenamidone, Famoxadone), por lo cual se espera que presentan resistencia cruzada con ellos.
Kresoxim-metil, azoxystrobin, trifloxystrobin, picoxystrobin, pyraclostrobin.
Además de éstos, actúan en el mismo sitio de acción (QoI) famoxadone y fenamidone, dos fungicidas nuevos efectivos contra oomycetes. Todos estos presentan resistencia cruzada.
Las stobilurinas afectan germinación de esporas de Venturia inaequalis, oidios, Septoria spp.,
Pyrenophora teres, P. grisea, R. solani, C. beticola, Alternaria spp., Phytophthora infestans. Tambien presentan acción erradicante de oidios.
Pueden tener cierto movimiento sistémico y redistribución por: lentaabsorción desde capa cerosa de cutícula, movimiento en fase de vapor y readsorción en ceras cuticulares. Alta resistencia al lavado.
Guanidinas.
Afectan de manera inespecifica la integridad de la membrana celular.
Dodine
Se usa en frutales (sarna del manzano).
De contacto y con acción translaminar.
Buena residualidad, efecto retroactivo y antiesporulante.
Aunque posee múltiples sitios de acción, se ha reportado resistencia en Venturia inaequalis luego del uso intenso durante varios años.
Puede causar roñado.
Tiempo de entrada restringida: 48 hs.
Guazatina
Se usa en poscosecha.
Anilinopirimidinas.
Mepanipyrim, pyrimethanil, cyprodanil. Para frutales y cereales.
Básicamente desarrollado para el control de Botrytis.
Fenilpirroles.
Fludioxonil, fenpiclonil.
Existe en el mercado un producto registrado para Botrytis cinerea compuesto por principios activos de este grupo y del anterior: Cyprodanil + fludioxonil .
Antibióticos que inhiben la sintesis de proteinas.
Inhiben la elongación de la cadena proteica, actuando en ≠ lugares.
Blasticidin S de Streptomyces griseochromogenes, → P. grisea moderadamente sistémico.
Kasugamicina de Streptomyces kasugensis → P. grisea, sistémico, puede ser tóxico a plantas y animales.
Inhibidores de la biosíntesis de glicerofosfolípidos.
Estos son esenciales para el funcionamiento de membranas celulares.
∗ Subgrupo de inhibidores del la síntesis de fosfatidilcolina: edinfenfos, iprobenfos → Pyricularia grisea y otros patógenos en arroz
∗ Subgrupo de inhibidores del la síntesis de fosfatidilinositol: validamicina A → Rhizoctonia solani, y en arroz.
Fenilcarbamatos.
Dietofencarb. Se utiliza en otros países para Botrytis cinerea.
Son efectivos contra hongos con resistencia a benzimidazoles. Parecen tener el mismo sitio de acción que este grupo pero hay resistencia cruzada negativa, o sea, las cepas insensibles a benzimidazoles son más sensibles a éste grupo.
Benzamidas.
Se supone interferencia con microtúbulos.
Compuestos experimentales: ICIA0001 (→ Oomycetes) y XRD563 (→ enfermedades de cereales).
Otros inhibidores de la síntesis de ADN.
Himexazol. → Pythium, Fusarium, Corticium sasakii,
Aphanomyces.
Hidroxipirimidinas.
Inhiben la síntesis de ARN. Etirimol, dimetirimol, bupirimato.
Específicos de oidios. Inhiben elongación de tubo germinativo y formación de apresorio.
Fenoxiquinolinas.
Inhiben la síntesis de ARN. Un producto experimental, LY214352 actúa contra muchos ascomicetes: A. solani, P. italicum, C. beticola, S. nodorum, Aspergillus nidulans, Magnaporthe grisea.
Inhibidores de la biosíntesis de la quitina.
Quitina es componente de Ascomycetes, Deuteromycetes y Basidiomycetes, paredes de hongos inferiores contienen celulosa. Polioxinas aislados de Streptomyces cacaoi var. asoensis provocan hinchazón y explosión de puntas de hifas y de tubos germinativos.
Selectividad parece deberse a asimilación diferencial. → Rhizoctonia solani, C. miyabeanus, Alternaria kikuchiana.
Inhibidores de biosíntesis de melaninas.
Melanina en pared de apresorios es necesaria para la penetración de Ascomycetes y Deuteromycetes pigmentados. → Pyricularia grisea, Colletotrichum lagenarium, S. lindemuthianum.
Triciclazol, piroquilon, KTU 3616.
Fungicidas que inhiben la respiracion afectando la fosforilación oxidativa.
Derivados de nitrofenol:
∗ Dinocap, binapacril, nitrotal-isopropil. → oidios
∗ Drazoxolon. → damping-off, Fusarium, Pythium, oidios.
∗ Fluazinam. → Botrytis, Alternaria, Colletotrichum, Phytophthora, Venturia.
Inhibidores de la respiración en el complejo II.
Inhibidores del complejo succinato dehidrogenasa.
Específicos de Basidiomycetes, entre ellos Rhizoctonia (Corticium), Puccinia, Tilletia y Ustilago.
∗ Carboximidas: Carboxin y oxicarboxin son sistémicos. → Helminthosporium, Rhizoctonia, Ustilago, Sphaerotheca reillians y Tilletia caries.
∗ Fenfuram, metfuroxam, mepronil.
∗ Thiazoecarboxanilidas: Thifluzamide – experimental.
Oxazolidinediona:
Inhibe la respiración en el complejo III.
Famoxodone → P. viticola, P. infestans, A. solani, y en cereales: Puccinia, Septoria, P. teres.
Organofosforados.
Pyrazofos, ditalimfos, triamifos. → Oidios.
Hidrocarburos aromáticos y compuestos relacionados.
Hexaclorobenceno, quintoceno, tecnaceno, cloroneb, etridiazole, bifenilo, 2-fenilfenol → patógenos de suelo y de semilla de varios cultivos.
Otros.
Quinoxifen. → oidios en cereales
FUNGICIDAS ESPECÍFICOS PARA OOMYCETES.
Fenilamidas.
Específicos para Oomycetes, no se sabe por qué.
Inhiben formación de ARNr, por lo tanto controlan cuando empieza a crecer el micelio. Tienen poco efecto sobre liberación de zoosporas, su movimiento, enquistado y germinación, penetración y formación de haustorios, recién controlan bien el desarrollo del hongo luego de la formación de haustorio primario.
Tienen alto riesgo de generar resistencia.
Incluyen:
∗ acilalaninas: metalaxil, benalaxil
∗ butirolactonas: metilfuram, ciprofuram
∗ una de las oxazolidonas: oxadixil
Además de su acción curativa, las acilalaninas poseen un buen efecto residual, por lo cual se utilizan para proteger desde dentro de la planta contra nuevas infecciones.
Sistemia acrópeta.
Fosetil.
Modo de acción: se transforma en H3PO3, de acción directa y a través del aumento de las defensas del vegetal.
Fosetil aluminio.
Espectro de acción: Phytophthora spp. “de suelo”, Pythium, Bremia lactucae, Plasmopara viticola.
No controla Phytophthora infestans, Peronospora sp., Sclerospora sp.
Sistemia ascendente y descendente.
Cymoxanil.
Cimoxanil. → Phytophthora infestans, Bremia lactucae, Pythium sp., Plasmopara viticola
Muy buen efecto curativo. Afecta crecimiento del micelio más que formación y germinación de zoosporas.
Protiocarb y propamocarb.
Propamocarb clorhidrato. → géneros Phytophthora, Peronospora, Bremia, Pythium, Pseudoperonospora y Aphanomyces.
Dimetomorf
Efectivo contra Oomycetes excepto Pythium.
EVOLUCION EN CUANTO A MODOS DE ACCIÓN.
PROTEINAS ANTI-FUNGICAS.
Varias compañías están estudiando proteínas con propiedades antifúngicas, se han identificado algunas tan efectivos como los IBE contra algunos hongos importantes.
COMPUESTOS CON ACCIÓN SOBRE INTERACCIÓN PLANTA-PATOGENO.
Se pretende desarrollar productos que actúen en alguno de los siguientes 3 mecanismos de defensa de la planta :
- Barreras físicas y químicas.
∗ Auxinas como ANA reducen severidad de marchitamiento por Fusarium en tomate.
∗ La citoquinina quinetina tiene efecto contra Alternaria spp. y oidios
∗ Etileno
- Hipersensibilidad.
Diclorociclopropanos → Pyricularia grisea en arroz
- Resistencia sistémica adquirida (SAR).
Actualmente se están tratando de estudiar y desarrollar sustancias que activen los mecanismos de defensa de la planta. Estos productos podrían tener efecto más o menos notorio sobre hongos, bacterias y virus, o sea contra todos los microorganismos que infectan la planta.
Se ha reportado que tienen un efecto de este tipo :
∗ fosetil aluminio contra Phytophthora fragariae y Bremia lactucae
∗ metalaxil, lo que explicaría un leve efecto contra hongos superiores, como Alternaria solani y Fusarium spp. en papa.
Acido salicílico se acumula naturalmente al inducirse las reacciones de resistencia.
Benxotiadizole (CGA245704) → suprime Alternaria spp., controla aceptablemente oomycetes y
Colletotrichum spp.
Algnunos otros productos pueden tener un efecto de aumentar las defensas:
∗ trilfluralina
∗ estreptomicina
inglés), perteneciente al 
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